肺炎链球菌融合蛋白疫苗研究进展
摘要：肺炎链球菌是一种对人类健康危害较大的条件致病菌, 目前其疫苗研究已取得了巨大突破, 但既往研究主要集中在荚膜多糖疫苗上, 存在诸多局限性。近年来, 随着生物学技术及基因工程技术的飞速发展, 由肺炎链球菌毒力因子及表面蛋白制作的蛋白疫苗研发迅速。其中, 将肺炎链球菌不同的表面蛋白质作为免疫原组分构建的融合蛋白疫苗, 极大地增强了疫苗的免疫原性, 且已取得一定的试验效果, 未来进一步研究将有望取代荚膜多糖疫苗。
关键词：肺炎链球菌; 融合蛋白疫苗; 肺炎链球菌表面蛋白; 肺炎链球菌溶血素; 肺炎链球菌表面黏附素A;
作者简介： *闵迅, E-mail: minxunzmu@ 163. com;
收稿日期：2019-01-09
基金： 国家自然科学基金 (81460317); 贵州省科学技术基金 (黔科合LH字[2014]7553号);
Research Progress in Streptococcus Pneumoniae Fusion Protein Vaccine
ZHANG Suting HUANG Jian MIN Xun
School of Laboratory Medicine, Zunyi Medical University Department of Medical Laboratory, Affiliated Hospital of Zunyi Medical University
Abstract：Streptococcus pneumoniae is a kind of conditional pathogen which is harmful to human health. At present, great breakthroughs have been made in the vaccine research. However, previous studies mainly focused on capsular polysaccharide vaccine, which has many limitations. In recent years, with the rapid development of biological technology and gene engineering technology, protein vaccines made from virulence factors and surface proteins of streptococcus pneumoniae are in rapid development. Among them, the fusion protein vaccine constructed with different surface proteins of streptococcus pneumoniae as immunogenic components has greatly enhanced the immunogenicity of the vaccine, and has achieved certain test results, which may hopefully replace the capsular polysaccharide vaccine with further studies in the future.
Keyword：Streptococcus pneumoniae; Fusion protein vaccine; Pneumococcal surface protein; Pneumolysin; Pneumococcal surface adhesin A;
Received： 2019-01-09
肺炎链球菌是一种革兰阳性兼性厌氧菌, 其主要通过呼吸道飞沫与人直接接触传播, 常以无症状的方式定居于健康人群的呼吸道, 是一种机会致病菌。在免疫功能相对较差的人群 (老年人、婴幼儿) 及免疫缺陷人群中, 肺炎链球菌可引起多种侵袭性疾病[1], 如社区获得性肺炎和脑膜炎等[2]。由于肺炎链球菌导致的疾病的严重性越来越受重视, 故WHO建议各国进行常规的儿童肺炎链球菌疫苗接种[3]。目前, 临床广泛使用的肺炎链球菌疫苗有23价肺炎链球菌多糖疫苗、7价肺炎链球菌结合疫苗。但其仅限于特定的血清型, 且由于组分复杂而导致生产成本高。因此, 以肺炎链球菌蛋白为免疫原的新型疫苗被提出[4]。目前, 常作为肺炎链球菌蛋白质疫苗免疫原的有肺炎链球菌表面蛋白 (pneumococcal surface protein, Psp) A、肺炎链球菌溶血素 (pneumolysin, Ply) 、肺炎链球菌表面黏附素A (pneumococcal surface adhesin A, PsaA) 等。其中Psp A的作用机制主要为抑制肺炎链球菌表面的补体沉积, 从而减少吞噬作用[5,6]。Ply是一种胆固醇依赖性溶细胞素, 是肺炎链球菌致病的重要因子, 所以常用其减毒形式 (Pds、ΔA146Ply等) 作为肺炎链球菌疫苗组分[7,8,9]。PsaA是一种分子量为37 000的脂蛋白, 在所有肺炎链球菌血清型中均具有遗传保守性, 对调节肺炎链球菌黏附于细胞表面的能力至关重要[10,11,12]。此外, 三联组氨酸蛋白D、黏附毒力因子A等其他毒力因子也作为免疫原在肺炎链球菌融合蛋白疫苗的研发中被使用[13]。现就肺炎链球菌融合蛋白疫苗的研究进展予以综述。
1 PspA相关融合蛋白质疫苗
1.1 PspA家族融合蛋白
由于PspA结构具有多样性, 所以基于PspA的疫苗应包含两个主要家族 (1和2) 的片段, 每个家族至少一个, 才能诱导针对更多血清型肺炎链球菌的保护[14]。有研究表明, 使用含PspA家族1和2的融合部分 (PspA1ABC-4B和PspA1ABC-3AB) 片段的PspA融合蛋白, 能诱导针对不同PspA片段肺炎链球菌的保护[15]。用Psp A融合蛋白免疫的小鼠, 能干扰产生不同Psp A片段肺炎链球菌C3的沉积, 而单独针对Psp A家族1 (PspA1ABC) 和PspA家族2 (PspA3ABC) 片段所制备的单一蛋白质疫苗仅对其自身家族有效, 所以PspA融合蛋白疫苗可作为基于PspA抗肺炎链球菌感染的有效免疫策略[15]。Xin等[16]将来自肺炎链球菌菌株Rx1 (家族1) 和EF5668 (家族2) 的PspA组合形成PspA/Rx1-EF5668融合蛋白疫苗, 发现该融合疫苗的免疫保护效果明显优于单一家族PspA。Piao等[17]进一步研究了不同PspA家族融合蛋白的效果证实, 不同组合的融合蛋白免疫作用有差别, PspA3+2疫苗优于PspA2+4或PspA2+5疫苗。
1.2 PspA-Pds
Goulart等[18]将重组PspA-Pds融合蛋白接种到小鼠后发现, 其可产生针对PspA和Pds的抗体, 这些抗体能够结合表达同源PspA的肺炎链球菌, 且结合能力与单独接种PspA蛋白质疫苗所产生的抗体相同, 故针对融合蛋白的抗体, 对携带异源PspA的细菌同样能产生特异性的抗体。为提高PspA-Pds融合蛋白的免疫原性, 有学者进一步构建了表达Psp A-PdT的融合蛋白, 在初免-加强策略中用Psp A-PdT蛋白和肺炎链球菌重组表面蛋白A构建的肺炎链球菌重组表面蛋白A-PdT蛋白诱导高抗体反应, 促进了IgG1/IgG2抗体同种型转变, 增强了补体沉积到肺炎链球菌表面, 从而保护小鼠免受致命攻击[19]。随后, 他们又构建了两种新的表达SP0148和SP2108蛋白的重组卡介苗菌株, 结果发现使用两种重组卡介苗菌株免疫小鼠后, 可以诱导高水平的白细胞介素 (interleukin, IL) -17A和γ干扰素产生。此外, Goulart等[20]将这些重组卡介苗菌株与重组卡介苗Psp A-PdT (重组卡介苗Mix) 组合产生的融合蛋白联合使用发现可诱导更高水平的细胞免疫应答和体液免疫应答。因此, 联合使用重组卡介苗菌株产生的融合蛋白可作为肺炎链球菌疫苗的初免-加强策略, 以提高针对肺炎链球菌感染的保护力。
1.3 PspA-PspC-产气荚膜梭菌肠毒素 (clostridium perfringens enterotoxin, CPE)
如何将疫苗的有效成分传递至黏膜组织是黏膜疫苗在开发中必须考虑的问题。闭锁蛋白-4在鼻咽相关淋巴组织的上皮细胞中高表达, PspC-CPE的C端片段可以与闭锁蛋白-4结合, 从而有效地将融合抗原传递给鼻咽相关淋巴组织和诱导抗原特异性免疫应答。Suzuki等[21]将Psp C-CPE与PspA融合开发了一种鼻肺炎链球菌疫苗, Psp A-PspC-CPE与闭锁蛋白-4结合可以有效附着于鼻咽相关淋巴组织, 在用PspA-PspC-CPE鼻部免疫诱导的血清和支气管肺泡灌洗液中, 他们发现了针对PspA特异性的Ig G和IgA。这证明, PspA-PspC-CPE融合蛋白诱导机体产生的免疫反应能有效预防肺炎链球菌感染。
1.4 PsaA-PspA
在评价Psa A-PspA融合蛋白对致死性感染保护效果的研究中, 与鼻内感染肺炎链球菌后的牛血清蛋白对照组相比, PsaA-PspA融合蛋白免疫组小鼠血液和肺中的肺炎链球菌水平更低[22]。同时, 该研究对融合蛋白PsaA-PspA23和单一PspA4疫苗进行对比发现, 与单一Psp A4疫苗对照组相比, PsaA-PspA23融合蛋白免疫组小鼠肺部肺炎链球菌菌株的清除率升高, 血液中的细菌负荷降低, 并显着提高了小鼠存活率 (超过50%) 。因此, 研究者认为这种含融合蛋白的二价疫苗可能是荚膜多糖疫苗的良好替代品[23]。
1.5 细菌样颗粒 (bacterium-like particles, BLPs) /PspA-锚钩蛋白 (protein anchor, PA)
BLP传递系统的鼻内肺炎链球菌蛋白疫苗是将PspA (家族2clade4) 与PA融合, 使BLPs表面表达Psp A。研究显示, BLPs/Psp A-PA鼻内免疫小鼠可以诱导其血清中产生针对PspA的特异性IgG, 呼吸道灌洗液中产生特异性IgA[24]。因此, 通过BLPs靶向递送细菌抗原可以通过诱导全身和黏膜免疫应答来预防肺炎链球菌感染。
Yu等[25]通过皮下注射融合蛋白Psa A-PspA23和单一蛋白质PspA4的混合物接种小鼠, 同时使用Psp A2-PA-BLPs和PspA4-PA-BLPs的混合物通过鼻内途径免疫另一批小鼠, 建模完成后, 用两种不同血清型肺炎链球菌攻击小鼠。结果发现经全身性疫苗和黏膜疫苗诱导后, 针对PspA的IgG均显着增加, 且黏膜疫苗能在小鼠黏膜中诱导特异性IgA的产生。由此证实, 可以使用两种疫苗经不同途径实行共同免疫策略。
1.6 PspA-多胺转运蛋白D
Converso等[26]研究发现, PspA和多胺转运蛋白D组成的融合蛋白不仅能提供针对全身感染的保护, 还能减少肺炎链球菌在鼻咽部的定植, 这是单独使用PspA蛋白质疫苗皮下免疫所没有的效果。此外, 该研究还探讨了Psp A-多胺转运蛋白D融合蛋白保护功效的潜在机制, 揭示了该融合蛋白疫苗可增加不同血清型和遗传背景的肺炎链球菌菌株的结合能力、增强吞噬作用, 并促进脾细胞分泌IL-17抗体的产生。
1.7 特异性靶向人FcγRⅠ型 (specifically targets human FcγR typeⅠ, hFcRⅠ) -PspA
Fc受体是细胞膜表面能与Ig Fc片段结合的受体。抗原靶向Fc受体可以在不存在佐剂的情况下增强对抗原的免疫应答, Bitsaktsis等[27]使用抗hFcRⅠ-PspA和重组Psp A在不存在佐剂的情况下鼻内免疫野生型和hFcRⅠ转基因小鼠。结果显示, 接受抗hFcRⅠ-PspA的hFcRⅠ转基因小鼠血清和支气管肺泡灌洗液中的肺炎链球菌特异性IgA、IgG2c和IgG1抗体表达增加且血清补体C3水平明显升高。此外与用肺炎链球菌重组表面蛋白A免疫相比, 用抗hFcRⅠ-PspA鼻内免疫的hFcRⅠ转基因小鼠产生了强烈的细胞和体液免疫应答, 并增强了对致死性肺炎链球菌攻击的保护作用[27]。
1.8 鞭毛蛋白 (flagellin, Fla) B-PspA
Fla可以依赖Toll样受体 (Toll-like receptor, TLR) 5实现信号表达和转导, 其可直接作用于巨噬细胞, 上调小窝蛋白-1的敏感性。由于TLR5和窝小蛋白-1均在肺部、皮肤、肠道、脾脏中表达良好, 故Lim等[28]将FlaB作为针对PspA的黏膜佐剂制备了融合蛋白。在青年和老年小鼠的肺炎感染模型中, FlaB-PspA融合蛋白诱导了更高水平的抗PspA特异性IgG和IgA应答, 并对老年小鼠中肺炎链球菌的致死攻击具有高保护效力[28]。同时该实验表明, 小窝蛋白-1/TLR5信号在年龄相关的先天性免疫反应中起关键作用, 且针对TLR5的FlaB-PspA刺激可能是治疗老年人肺炎链球菌感染的有效策略。该课题组用FlaB-PspA融合蛋白经鼻内免疫小鼠发现, 其不仅能诱导小鼠产生更高水平的特异性IgG和IgA, 还能为肺炎链球菌的致死性攻击提供保护。此外, Nguyen等[29]研究发现FlaB-PspA还能诱导针对异源荚膜类型的交叉保护。上述研究表明, FlaB-PspA融合蛋白可作为肺炎链球菌黏膜疫苗或多价荚膜疫苗的有效伴侣蛋白。
1.9 PspA-胆碱结合蛋白A (choline binding protein A, CbpA) -Ply
肺炎链球菌CbpA在肺炎链球菌的感染过程中有一定的致病作用。Chen等[30]使用不同的小鼠模型来测试各种多价蛋白质疫苗的功效, 这些疫苗包含免疫原Ply、CbpA或Psp A的全长或肽区域的各种组合:具有L460D替代的Ply类毒素 (在此简称L460D) 与CbpA的保护性肽表位融合;L460D与含有Psp A富含脯氨酸区的CD2肽融合;L460D和H70 (L460D+H70) 的组合;H70+YLN和其他组合。经腹膜内或皮下使用各种抗原组合的3个剂量 (间隔2周) 免疫小鼠, 然后用不同种血清型肺炎链球菌通过不同的感染途径攻击小鼠。在腹腔感染脓毒症模型中, H70+YLN始终能抵抗1、2、6A型菌株的致死性感染, 而CD2+YLN和L460D+H70的组合也能在致死性感染中提供有效保护;PspA衍生的抗原组分在静脉内败血症 (3型和6A型攻击菌株) 模型中表现出良好的保护作用, 且H70在有或没有L460D或YLN的情况下均能诱导较好的免疫反应。因此, H70+YLN的三价抗原组合在多种肺炎链球菌攻击模型中均表现出良好的保护效果。
2 PsaA相关融合蛋白质疫苗
2.1 PsaA-Ply
PsaA蛋白疫苗中融合Ply, 可以诱导表达高水平的IgG和IgA, 且仅使用纳克级别的该疫苗进行接种, 可引起小鼠特异性的抗原抗体反应。虽然接种PsaA-Ply融合蛋白不能保护小鼠免受肺炎链球菌攻击, 但研究证实Ply可用作新型黏膜佐剂, 以显着增强局部和全身体液反应[31]。Lu等[32]制备了Psa A与Ply无毒衍生物PdT的融合蛋白, 并将细胞壁多糖与融合蛋白偶联, 当鼻内给予CT佐剂一同免疫后, 融合蛋白能较细胞壁多糖、Ply和PsaA三种单一抗原的等摩尔混合物诱导更高的血清抗体滴度[32]。Pope等[33]研究发现, Δ6Ply与PsaA融合可以显着调节和增强促炎性CD4+T细胞应答。因为融合蛋白可使Δ6Ply将PsaA有效地递送至抗原呈递细胞表面, 有助于启动抗肺炎链球菌CD4+T细胞免疫过程[33]。
2.2 霍乱毒素B亚基 (cholera toxin B subunit, CTB) -PsaA
CTB负责霍乱全毒素与细胞的结合, 是一种疫苗的黏膜佐剂。Pimenta等[34]发现, 使用CTB-PsaA融合蛋白进行鼻内免疫能保护小鼠免于肺炎链球菌在鼻咽部的定植, 且不会改变小鼠口腔和鼻咽的正常微生物群。Arêas等[35]将CTB基因与Psa A基因进行融合, 并将纯化的重组CTB-PsaA融合蛋白用于BALB/c小鼠的鼻内免疫实验。结果显示, CTB-PsaA能够诱导小鼠血清、唾液、鼻黏膜及支气管洗涤液中肺炎链球菌抗体的表达, 表明CTB-PsaA可作为肺炎链球菌候选蛋白疫苗进行研究。在随后的研究中, 他们将CTB-PsaA融合蛋白通过腹腔注射的方式免疫BALB/c小鼠, 然后将小鼠暴露于肺炎链球菌中, 结果发现与其他组相比, 免疫组小鼠虽然生存时间并没有延长, 但其血清中却产生了大量Ig G抗体[36]。
2.3 Psa A-IL-2和PsaA-IL-4
用完全弗氏佐剂乳化的PsaA免疫小鼠, 可以提供针对肺炎链球菌致死性感染的保护。但完全弗氏佐剂的使用在人类中不被接受, 所以研究者们需寻求其替代方法。有学者将PsaA的编码序列与编码小鼠IL-2、IL-4或源自小鼠IL-1β的基因序列进行连接, 构建了Psa A-细胞因子融合蛋白并在大肠埃希菌中进行表达[37]。结果显示, 用PsaA-IL-2或Psa A-IL-4免疫小鼠产生的PsaA特异性抗体的滴度与使用完全弗氏佐剂时相当。另外, 由于PsaA-Adj (Adj是一种不完全弗式佐剂) 诱导产生的抗体主要为Ig G1亚类, 而PsaA-IL-2和Psa A-IL-4除IgG1外还诱导小鼠表达大量的IgG2a, 所以PsaA-Adj或PsaA-IL-4均显示出对肺炎链球菌腹膜内攻击的保护作用[37]。在无佐剂的情况下, 用Psa A免疫和Psa A-IL-2免疫的小鼠在受到攻击后的存活率分别为0% (0/20) 和5% (1/20) [37]。这说明Psa A与IL-2或IL-4的组合, 单独或与合适的黏膜佐剂联合, 可作为肺炎链球菌的候选疫苗。
2.4 PsaA-肺炎链球菌胆固醇结合蛋白A (strepto-coccus pneumoniae cholesterol binding
protein A, PcpA) PcpA可能在肺炎链球菌的黏附过程中起作用。赵博[38]构建了PsaA-PcpA融合蛋白, 并用其免疫小鼠, 检测特异性抗体水平, 同时用不同血清型的肺炎链球菌对免疫后的小鼠进行攻毒, 检测肺组织及鼻腔中的细菌定植量。结果发现, PsaA-PcpA融合蛋白能够有效刺激小鼠产生免疫应答, 血清抗体效价在1×105以上, 而呼吸道中细菌定植量显着下降。这表明, PsaA-PcpA融合蛋白不仅能减少肺炎链球菌对宿主细胞的黏附, 还能刺激机体产生高效价的抗体, 从而起到较好的保护作用。
3 其他融合蛋白质疫苗
Ply的减毒形式ΔA146Ply具有较好的黏膜佐剂功能, 其与DnaJ融合表达后通过黏膜免疫可以诱导C57BL/6小鼠产生较高水平的特异性Ig G和s IgA, 可帮助小鼠有效抵抗肺炎链球菌在鼻咽部、肺部的定植和致死性感染, 保护效果与市售23价肺炎链球菌多糖疫苗相当, 且具有非血清型依赖性[39]。Su等[40]发现, 与单独给予DnaJ相比, 用融合蛋白DnaJ-ΔA146Ply经皮下免疫的小鼠产生的抗DnaJ IgG滴度更高, 且可以诱导针对定植和致死性肺炎链球菌感染的B细胞和T细胞依赖性保护, 能明显提高小鼠血清中的γ干扰素、IL-4和IL-17A水平[40]。此外, Wang等[41]证实用DnaJ-ΔA146Ply融合蛋白皮下免疫的TLR2-/-小鼠, 在用肺炎链球菌菌株D39或19F攻击后显示出较野生型小鼠更低的存活率和更高的细菌定植;且在TLR2-/-小鼠脾细胞中, γ干扰素水平降低。该研究结果表明, TLR2的表达对于用DnaJ-ΔA146Ply免疫的小鼠能有效诱导产生辅助性T细胞1的免疫应答。同时也有研究表明, DnaJ-ΔA146Ply融合蛋白可通过蛋白激酶B和核因子κB信号通路刺激巨噬细胞诱导免疫应答[42]。
另有研究者将衍生自CbpA的生物活性肽与Ply类毒素L460D进行融合, 并在鼻咽炎、中耳炎、肺炎、败血症和脑膜炎小鼠模型中测试融蛋白质疫苗的功效[43]。结果证实, 与单独的肺炎链球菌疫苗相比, CbpA-L460D肺炎链球菌融合蛋白具有更广泛的免疫原性, 且抗体在体外对肺炎链球菌、脑膜炎奈瑟球菌和流感嗜血杆菌均有活性。此外, 该融合蛋白疫苗可在被动免疫和主动免疫途径中保护小鼠免于肺炎链球菌感染。
除上述较为广谱的融合蛋白疫苗外, 还有研究者设计了肺炎链球菌菌毛蛋白亚基RrgB的三种变体组成的Rrg B321融合蛋白, 由于肺炎链球菌菌毛1存在于30%～50%的侵袭性致病菌株中, 所以由RrgB321组成的疫苗可能覆盖30%或更多血清型的肺炎链球菌菌株[44,45]。
4 小结
PspA作为在各型肺炎链球菌中广泛表达且免疫原性最强的免疫原被广泛应用于融合蛋白疫苗中。目前, 肺炎链球菌融合蛋白的研发主要有两种思路: (1) 将不同免疫原位点融合, 以达到覆盖更多菌株的目的; (2) 将抗原位点与疫苗佐剂蛋白融合, 以达到放大免疫反应或将疫苗有效成分更好运送到菌株定植部位的目的。在今后的融合蛋白研发中, 将两种思路结合可以取得更大进展。此外, 肺炎链球菌融合蛋白疫苗研究主要处于临床前研究阶段, 研究对象主要为小鼠, 未来期待更多的临床研究数据和成果。
参考文献
[1] Terry JE. Ocular pathogenicity of Streptococcus pneumoniae[J].J Am Optom Assoc, 1984, 55 (8) :587-590.
[2] van de Beek D, de Gans J, Tunkel AR, et al. Community-acquired bacterial meningitis in adults[J]. N Engl J Med, 2006, 354 (1) :44-53.
[3] WHO Publication. Pneumococcal vaccines WHO position paper-2012-Recommendations[J]. Vaccine, 2012, 30 (32) :4717-4718.
[4]骆诗露, 黄健, 韩道宾, 等.肺炎链球菌蛋白质疫苗研究进展[J].山东医药, 2016, 56 (10) :102-104.
[5] TU AH, Fulgham RL, Mccrory MA, et al. Pneumococcal surface protein A inhibits complement activation by Streptococcus pneumoniae[J]. Infect Immun, 1999, 67 (9) :4720-4724.
[6] Ren B, Szalai AJ, Hollingshead SK, et al. Effects of PspA and antibodies to PspA on activation and deposition of complement on the pneumococcal surface[J]. Infect Immun, 2004, 72 (1) :114-122.
[7] Paton JC, Ferrante A. Inhibition of human polymorphonuclear leukocyte respiratory burst, bactericidal activity, and migration by pneumolysin[J]. Infect Immun, 1983, 41 (3) :1212-1216.
[8] Paton JC, Rowan-kelly B, Ferrante A. Activation of human complement by the pneumococcal toxin pneumolysin[J]. Infect Immun, 1984, 43 (3) :1085-1
[9] Darrieux M, Goulart C, Briles D, et al. Current status and perspectives on protein-based pneumococcal vaccines[J]. Crit Rev Microbiol, 2015, 41 (2) :190-200.
[10] Morrison KE, Lake D, Crook J, et al. Confirmation of psaA in all90 serotypes of Streptococcus pneumoniae by PCR and potential of this assay for identification and diagnosis[J]. J Clin Microbiol, 2000, 38 (1) :434-437.
[11] Berry AM, Paton JC. Sequence heterogeneity of Psa A, a 37-kilodalton putative adhesin essential for virulence of Streptococcus pneumoniae[J]. Infect Immun, 1996, 64 (12) :5255-5262.
[12] Briles DE, Hollingsheda S, Brooks-Walter A, et al. The potential to use PspA and other pneumococcal proteins to elicit protection against pneumococcal infection[J]. Vaccine, 2000, 18 (16) :1707-1711.
[13] Coats MT, Benjamin WH, Hollingshead SK, et al. Antibodies to the pneumococcal surface protein A, Psp A, can be produced in splenectomized and can protect splenectomized mice from infection with Streptococcus pneumoniae[J]. Vaccine, 2005, 23 (33) :4257-4262.
[14] Hollingshead SK, Becker R, BRILES DE. Diversity of Psp A:mosaic genes and evidence for past recombination in Streptococcus pneumoniae[J]. Infect Immun, 2000, 68 (10) :5889-5900.
[15] Darrieux M, Miyaji EN, Ferreira DM, et al. Fusion proteins containing family 1 and family 2 PspA fragments elicit protection against Streptococcus pneumoniae that correlates with antibody-mediated enhancement of complement deposition[J]. Infect Immun, 2007, 75 (12) :5930-5938.
[16] Xin W, Li Y, Mo H, et al. PspA family fusion proteins delivered by attenuated Salmonella enterica serovar Typhimurium extend and enhance protection against Streptococcus pneumoniae[J].Infect Immun, 2009, 77 (10) :4518-4528.
[17] Piao Z, Akeda Y, Takeuchi D, et al. Protective properties of a fusion pneumococcal surface protein A (Psp A) vaccine against pneumococcal challenge by five different Psp A clades in mice[J]. Vaccine, 2014, 32 (43) :5607-5613.
[18] Goulart C, da Silva TR, Rodriguez D, et al. Characterization of protective immune responses induced by pneumococcal surface protein A in fusion with pneumolysin derivatives[J]. PLoS One, 2013, 8 (3) :e59605.
[19] Goulart C, Rodriguez D, Kanno AI, et al. Recombinant BCG expressing a PspA-PdT fusion protein protects mice against pneumococcal lethal challenge in a prime-boost strategy[J]. Vaccine, 2017, 35 (13) :1683-1691.
[20] Goulart C, Rodriguez D, Kanno AI, et al. A combination of recombinant mycobacterium bovis BCG strains expressing pneumococcal proteins induces cellular and humoral immune responses and protects against pneumococcal colonization and sepsis[J]. Clin Vaccine Immunol, 2017, 24 (10) :354-358.
[21] Suzuki H, Watari A, Hashioto E, et al. C-terminal clostridium perfringens enterotoxin-mediated antigen delivery for nasal pneumococcal vaccine[J]. PLoS One, 2015, 10 (5) :e0126352.
[22] Lu J, Sun T, Wang D, et al. Protective immune responses elicited by fusion protein containing Psa A and PspA fragments[J]. Immunol Invest, 2015, 44 (5) :482-496.
[23] Yu J, Chen X, Li B, et al. A pneumococcal vaccine combination with two proteins containing PspA families 1 and 2 can potentially protect against a wide range of Streptococcus pneumoniae strains[J]. Immunol Res, 2018, 66 (4) :528-536.
[24] Wang D, Lu J, Yu J, et al. A Novel PspA protein vaccine intranasal delivered by bacterium-like particles provides broad protection against pneumococcal pneumonia in mice[J]. Ommunol Invest, 2018, 47 (4) :403-415.
[25] Yu J, Li B, Chen X, et al. Comparison of immunogenicity and protection of two pneumococcal protein vaccines based on Psa A and PspA[J]. Infect Immun, 2018, 86 (6) . pii:e00916-917.
[26] Converso TR, Goulart C, Darrieus M, et al. A protein chimera including PspA in fusion with Pot D is protective against invasive pneumococcal infection and reduces nasopharyngeal colonization in mice[J]. Vaccine, 2017, 35 (38) :5140-5147.
[27] Bitsaktsis C, Iglesias BV, Li Y, et al. Mucosal immunization with an unadjuvanted vaccine that targets Streptococcus pneumoniae PspA to human Fcγreceptor typeⅠprotects against pneumococcal infection through complement-and lactoferrin-mediated bactericidal activity[J]. Infect Immun, 2012, 80 (3) :1166-1180.
[28] Lim JS, Nguyen KC, Nguyen CT, et al. Flagellin-dependent TLR5/caveolin-1 as a promising immune activator in immunosenescence[J]. Aging Cell, 2015, 14 (5) :907-915.
[29] Nguyen CT, Kim SY, Kim MS, et al. Intranasal immunization with recombinant Psp A fused with a flagellin enhances cross-protective immunity against Streptococcus pneumoniae infection in mice[J].Vaccine, 2011, 29 (34) :5731-5739.
[30] Chen A, Mann B, Gao G, et al. Multivalent pneumococcal protein vaccines comprising pneumolysoid with epitopes/fragments of CbpA and/or PspA elicit strong and broad protection[J]. Clin Vaccine Immunol, 2015, 22 (10) :1079-1089.
[31] Douce G, Ross K, Cowan G, et al. Novel mucosal vaccines generated by genetic conjugation of heterologous proteins to pneumolysin (PLY) from Streptococcus pneumoniae[J]. Vaccine, 2010, 28 (18) :3231-3237.
[32] Lu YJ, Forte S, Thompson CM, et al. Protection against Pneumococcal colonization and fatal pneumonia by a trivalent conjugate of a fusion protein with the cell wall polysaccharide[J]. Infect Immun, 2009, 77 (5) :2076-2083.
[33] Pope C, Oliver EH, Ma J, et al. Genetic conjugation of components in two pneumococcal fusion protein vaccines enhances paediatric mucosal immune responses[J]. Vaccine, 2015, 33 (14) :1711-1718.
[34] Pimenta FC, Miyaji EN, Areas AP, et al. Intranasal immunization with the cholera toxin B subunit-pneumococcal surface antigen A fusion protein induces protection against colonization with Streptococcus pneumoniae and has negligible impact on the nasopharyngeal and oral microbiota of mice[J]. Infect Immun, 2006, 74 (8) :4939-4944.
[35] Arêas AP, Oliveira ML, Miyaji EN, et al. Expression and characterization of cholera toxin B-pneumococcal surface adhesin A fusion protein in Escherichia coli:Ability of CTB-PsaA to induce humoral immune response in mice[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2004, 321 (1) :192-196.
[36] Arêas AP, Oliveira ML, Miyaji EN, et al. Intradermal immunization of mice with cholera toxin B-pneumococcal surface protein A fusion protein is protective against intraperitoneal challenge with Streptococcus pneumoniae[J]. Infect Immun, 2005, 73 (6) :3810-3813.
[37] Gor DO, Ding X, Li Q, et al. Enhanced immunogenicity of pneumococcal surface adhesin A by genetic fusion to cytokines and evaluation of protective immunity in mice[J]. Infect Immun, 2002, 70 (10) :5589-5595.
[38]赵博.肺炎链球菌融合蛋白Psa A-PcpA疫苗的应用研究[D].长春:吉林大学, 2016.
[39] Liu Y, Wang H, Zhang S, et al. Mucosal immunization with recombinant fusion protein DnaJ-DeltaA146Ply enhances crossprotective immunity against Streptococcus pneumoniae infection in mice via interleukin 17A[J]. Infect Immun, 2014, 82 (4) :1666-1675.
[40] Su Y, Li D, Xing Y, et al. Subcutaneous Immunization with Fusion Protein DnaJ-DeltaA146Ply without Additional Adjuvants Induces both Humoral and Cellular Immunity against Pneumococcal Infection Partially Depending on TLR4[J]. Front Immunol, 2017, 8:686.
[41] Wang X, Yuan T, Yuan J, et al. Expression of Toll-like receptor 2by dendritic cells is essential for the DnaJ-DeltaA146Ply-Mediated Th1 immune response against streptococcus pneumoniae[J].Infect Immun, 2018, 86 (3) . pii:e00651-617.
[42]粟玉凤.融合蛋白DnaJ-ΔA146Ply经皮下免疫对小鼠肺炎链球菌感染的保护效果及机制研究[D].重庆:重庆医科大学, 2016.
[43] Mann B, Thornton J, Heath R, et al. Broadly protective proteinbased pneumococcal vaccine composed of pneumolysin toxoidCbpA peptide recombinant fusion protein[J]. J Infect Dis, 2014, 209 (7) :1116-1125.
[44] Harfouche C, Filippini S, Gianfaldoni C, et al. Rrg B321, a fusion protein of the three variants of the pneumococcal pilus backbone Rrg B, is protective in vivo and elicits opsonic antibodies[J].Infect Immun, 2012, 80 (1) :451-460.
[45] Moschioni M, De Aangelis G, Harfouche C, et al. Immunization with the Rrg B321 fusion protein protects mice against both high and low pilus-expressing Streptococcus pneumoniae populations[J]. Vaccine, 2012, 30 (7) :1349-1356.
