引 言
无花果（Ficus carica L.）为蔷薇目桑科榕属的多年生木本植物，雌雄异花，花隐于囊状总花托内，外观只见果不见花，故名为无花果[1].无花果的鲜果含有多种营养成分，不仅能治疗高血压、高血脂、冠心病、糖尿病、老年便秘等疾病，还能预防胃癌、肝癌、肺癌的发生[2].
随着人们对无花果营养价值和药用价值认识的深入，鲜食无花果的数量和质量已远远不能满足日益增长的市场需求，但无花果果实的含糖量非常高，表皮极易被微生物侵染，采后极易软化、褐变，腐烂[3-4],常温条件下只能保存 3~5 d,很难长途运销，严重影响了其经济效益。
目前，国内对于无花果贮藏保鲜方面的相关研究较少，国外尚属空白。本实验室对无花果贮藏保鲜方面进行了研究[5-7],杨清蕊[5]采用低温结合臭氧冰膜处理抑制了果实硬度的下降，减少可溶性固形物、维生素 C 和可滴定酸的损失，降低了失重率及腐烂率；王磊等[6]研究发现1-MCP 处理显着延缓了果实硬度的下降，抑制呼吸速率和 1- 氨 基 苯 丙 烷 -1- 羧 基 （ 1-aminocyclopropane-1-carboxylic-acid,ACC）含量的积累，降低 ACC 氧化酶（1-aminocyclopropane-1-carboxylic-ccid oxidase,ACO）和ACC 合成酶（1-aminocyclopropane-1-carboxylic-acid synthase,ACS）活性，从而显着降低果实内源乙烯的生成，延长了果实贮藏时间；然而单独系统研究贮藏温度对无花果保鲜效果影响的还未见报道。本试验通过研究不同温度处理对“波姬红”无花果采后生理指标及贮藏品质变化的影响，以确定无花果适宜的贮藏温度，为“波姬红”采后保鲜贮运提供理论基础和技术依据。
1 材料与方法
1.1 材料、仪器与试剂
1.1.1 试验材料
试验于 2011-2012 年进行，供试无花果品种为“波姬红”,采自河北省保定市高阳无花果园。栽培条件良好，八成熟时采收。选取成熟度、颜色、大小均匀一致。且无病虫害和机械伤的果实装箱，立即运回河北农业大学食品科技学院实验冷库，在 0~2℃预冷 24 h.
1.1.2 试验仪器
GB-1101 型光合、蒸腾作用测定系统（北京雅欣理仪科技有限公司）；质构仪（北京市分仪器技术公司）；S214D 电子天平（北京赛多利斯仪器系统有限公司）；T6 新世纪紫外可见分光光度计（北京普析通用仪器有限公司）；冷藏试验箱（天津绿达保鲜工程有限公司）；DZKW-D-1 电热恒温水浴锅（北京市光明医疗仪器厂）；DDS-12A 数显电导率仪（杭州东星仪器设备厂）；GL-20G高速冷冻离心机（上海安亭科学仪器厂）。
1.1.3 试验试剂
氢氧化钠，磷酸氢二钠，草酸，过氧化氢，磷酸二氢钠，愈创木酚，2-硫代巴比妥酸，三氯乙酸，淀粉，石英砂，浓硫酸，冰醋酸，碘液，酚酞，葡萄糖标准液；磷酸缓冲溶液，邻苯二酚，咔唑，乙醇，多聚半乳糖醛酸等均为分析纯。
1.2 试验设计与处理
根据本实验室前期研究结果，无花果的冰点温度为2.6℃，在2℃条件下有冷害症状发生[4],故本试验确定的贮藏温度为1、0、2℃。
试验处理：将“波姬红”无花果装于带有 0.01 mm 厚的聚氯乙烯袋（PVC, polyvinyl chloride）的塑料箱中，每袋 5 kg,每个处理 5 袋。分别贮藏于温度为1、0、2℃，相对湿度为 85%~95%的冷藏试验箱内，每隔 5 天测定 1次，每次取 5 个果，每个处理重复 3 次。
1.3 测定项目与方法
1.3.1 果实品质及贮藏效果指标的测定
硬度：质构仪测定，果实垂直放在测试平台，果柄朝下，每个处理取 5 个果测定，单果重复测定 2 次，最后取其平均值。测试压缩率为 10%,P/2 柱头（2 mm），测试速度为 2 mm/s.可滴定酸含量测定：参照《果蔬采后生理生化试验指导》[8]中指示剂滴定法进行测定。
维生素 C 的测定：采用碘量法测定[9].可溶性固形物含量的测定：用数显折光仪测定，取无花果匀浆的澄清液，平行测定 3 次。腐烂率：腐烂率（%）=腐烂果数/总果实数×100.
1.3.2 果实生理指标的测定
呼吸速率的测定：使用 GB-1101 型光合、蒸腾作用测定系统测定。采用偏袒式取样法，每个处理每次取 5个果实，称质量，在室温下测定其呼吸强度。呼吸强度以每千克无花果鲜果每小时释放的 CO2的毫克量计，单位 mg/（kg·h）。
过氧化氢酶（catalase,CAT）活性的测定：参照《果蔬采后生理生化试验指导》[8],采用紫外吸收法测定酶活性。CAT 是细胞内的一种抗氧化酶，能分解 H2O2为 H2O和 O2,从而减少 H2O2对果蔬组织可能造成的氧化伤害。
采用紫外吸收法测定酶活性，以每克果蔬样品每分钟吸光度值减少 0.01 为一个过氧化氢酶活性单位，单位（OD240/（min·g））。
过氧化物酶（peroxidase,POD）活性的测定：参照《果蔬采后生理生化试验指导》[8],通过比色法测定过氧化酶的活性。POD 是果蔬体内的一种重要的氧化还原酶，能催化 H2O2氧化酚类物质产生醌类化合物。采用比色法测定 470 nm 处吸光度的变化，以每分钟 OD 值变化 1 时为一个过氧化物酶活力单位，以酶的比活力表示其活性变化（A470/（min·g））丙二醛（malondialdehyde,MDA）含量的测定：MDA 是膜脂过氧化作用的主要产物之一，它的积累可作为果蔬衰老与膜伤害的标志。MDA 提取液的制备：取无花果 5 g 置于钵体中，加 10 mL 质量分数为 1%三氯乙酸溶液，在冰浴条件下研磨成匀浆。将匀浆全部转入离心管中，10 000 r/min 低温离心（4℃）20 min,上清液用于MDA 含量的测定。MDA 含量的测定：取上清液 2 mL（对照空白管中加 2.0 mL 质量分数为 1% TCA 溶液），加入3.0 mL 质量分数为 0.67%硫代巴比妥酸溶液，混匀后沸水浴上反应 20 min,迅速冷却后再离心（如澄清可以不离心）。取上清液测定 450、532、600 nm 波长下的吸光度，单位（μmol/g）。
果皮细胞膜相对电导率：参照熊庆娥的方法[10],略有改动。用 DDS-12A 数显电导率仪测定，随机取 5 颗无花果果实，用 10 mm 的打孔器取果皮组织，并切成约2 mm 厚的均匀圆形薄片，取 20 片于 25 mL 的刻度试管中，加 20 mL 去离子水振荡冲洗 3 次，取出组织小圆片用滤纸吸干附着的水分，放入 50 mL 的三角瓶中，加入20 mL 去离子水，在室温（24 ℃）下放置 30 min,并不断摇动，用电导率仪测出浸泡液的电导率 P1（μS/cm）；然后将三角瓶连同组织圆片于沸水浴中煮沸 15 min 以杀死组织，迅速冷却至室温后再测其电导率 P2（μS/cm），相对电导率 P（%）可根据下式求得：P（%）=100×（P1P0）/（P2P0）式中：P0为空白电导率，μS/cm.
1.4 结果统计方法
试验结果采用 SPSS 11.5 for Windows 软件进行统计分析，采用 Office 2007 Excel 绘图。
2 结果与分析
2.1 不同贮藏温度下无花果硬度的变化
如图 1 所示，在整个贮藏期间，“波姬红”在 3 个贮藏温度下硬度均呈下降的趋势，其中，在 2℃下贮藏的果实硬度下降最快，贮藏到第 30 天时，由入贮时的11.50 N,下降为 3.42 N,而1 和 0℃贮藏下的果实硬度分别为 4.6 N 和 4.0 N.1 和 0℃贮藏下的果实硬度与2℃贮藏差异达显着水平（P<0.05），而1 和 0℃处理之间差异不显着，但是1℃处理的果实的硬度还是优于 0℃处理。
