摘要：目的 探讨心脏成纤维细胞 （CFs） 生物表型多样性。方法 新生13天SD大鼠12只， 胰蛋白酶/胶原酶联合消化法分离培养新60只生大鼠CFs, 比较原代和传代培养细胞形态学变化， 免疫组织化学学检测鉴定常见成纤维细胞标记波形蛋白 （vimentin） 、成纤维细胞特异性蛋白1 （FSP1） 和盘状结构域受体 （DDR2） 的表达， 细胞免疫荧光检测CFs干细胞标记nanog、c-kit、sca-1、CD73和CD90的表达， 细胞免疫荧光三标技术检测CFs干细胞标记间的共表达情况。结果 酶联合消化法分离培养的CFs收获细胞量大， 第3代细胞活力好、纯度高。Vimentin、FSP1和DDR2在CFs中均表达， 但DDR2在CFs中呈强表达。部分CFs分别表达nanog、c-kit、sca-1、CD73和CD90, 部分nanog阳性的CFs分别和CD73、CD90和sca-1, 及其CD90和sca-1存在共表达， nanog+/CD73+共表达阳性率最高 （59.02%±8.39%） , 与其他3组相比差异均有极显着性 （P<0.01） ;而nanog+/CD90+共表达阳性率与nanog+/sca-1+之间差异无显着性 （P>0.05） , 但这两组与CD90+/sca-1+相比差异均有极显着性 （P<0.01） ;CD90+/sca-1+共表达阳性率均低于其他3组， 差异具有极显着意义 （P<0.01） .结论 CFs是具有干细胞特征混合细胞群， 在表型上具有多样性。
关键词：心脏成纤维细胞； 干细胞标记； 细胞培养； 免疫组织化学； 新生大鼠；
Multiple phenotypes in cardiac fibroblasts
Abstract:Objective To explore the multiple phenotypes in cardiac fibroblasts （ CFs） . Methods CFs of neonatal rats were isolated from twelve 1-3-day neonatal SD rats and cultured using combined type I collagenase （ w/v, 0. 1%） trypsin （ w/v, 0. 25%） digestion method. Morphological characteristics were observed between primary and subcultured CFs. Common molecular markers for fibroblasts such as vimentin, fibroblast specific protein （ FSP1） and discoidin domain receptors 2 （ DDR2） were detected by immunohistochemical staining. Nanog, c-kit, sca-1, CD73 and CD90 recognized as stem cell markers were evaluated in CFs by immunofluorescence staining, and co-expression of those markers was investigated by three-color immunofluorescence technology. Results By the combined enzyme digestion method, the isolated fibroblasts had large volume. Passage 3 cells exhibited good biological activity, fast proliferation and high purity. Vimentin, FSP1 and DDR2 were all expressed and DDR2 was strongly expressed in CFs. Nanog, c-kit, sca-1, CD73 and CD90 were detected in some CFs. Interestingly, CD73, CD90 and sca-1 were co-expressed with nanog positive CFs respectively and the result showed the positive expression rate of nanog+/CD73+was the highest than other three groups （ 59. 02% ± 8. 39%） . It had significant different （ P < 0. 01） . while the positive rate of nanog+/CD90+in CFs had no different with the rate of nanog+/sca-1+ （ P > 0. 05） . And the rate of nanog+/CD90+and nanog+/sca-1+ had extremely significant different with the rate of CD90+/sca-1+ （ P < 0. 01） . But the positive rate of CD90+/sca-1+ was significantly lower than that in the other three groups （ P < 0. 01） . Conclusion CFs have several subpopulations with stem cell characteristics and multiple phenotype.
Keyword:Cardiac fibroblast; Stem cell marker; Cell culture; Immunohistochemical staining; Neonatal rat;
心脏成纤维细胞 （cardiac fibroblasts, CFs） 占心脏细胞总数的50%~70%, 是心肌组织重要的支持细胞， 抗缺氧损伤能力强， 即使是在长期纤维化状态下， 仍具有较高的增殖和代谢活性[1].传统观念认为， 成纤维细胞是一群均一的细胞， 在不同的器官组织中， 发挥其支持和分泌功能。近期研究发现， 成纤维细胞具有显着异质性， 表现在细胞形态大小[2]、增殖特性[3], 胶原合成[4], 分泌细胞因子和细胞表面受体等[5].前期研究发现， 不同器官成纤维细胞在细胞形态、生长增殖和表面受体表达等方面具有显着异质性， 且成纤维细胞具有间充质干细胞样特性， 表现出多向分化潜能[6,7].但CFs是否存在干细胞分子标记的表达差异， 以及干细胞标记的重叠表达等， 目前尚鲜见报道。
本研究拟采用体外分离培养技术和免疫细胞化学技术， 探讨CFs表达干细胞标记nanog、c-kit、sca-1、CD73和CD90及其共表达情况， 进一步确定CFs的不同亚群， 为进一步开发利用成纤维细胞提供可靠的实验支持， 为组织损伤原位修复提供更丰富的种子细胞来源奠定实验基础。
材料和方法
1. 实验材料
1~3 d SD新生大鼠12只， 体重 （7.1±0.31） g, 雌雄不限， 由新乡医学院实验动物中心提供， 动物合格证号：SCXK （豫） 2010-0002.
2. 方法
2.1 CFs分离培养和传代：
新生大鼠称重后处死， 无菌条件下取心脏， 预冷PBS冲洗， 剔除心房， 大血管和结缔组织， 用眼科剪将组织剪成约1 mm3小块， 加入0.1%胶原酶I （Roche公司） 和3倍体积的0.125%胰蛋白酶 （Sigma公司） , 37℃10 min, 吸管充分吹打， 上清加入等体积含低糖完全培养基[DMEM （Hyclone公司） +10%胎牛血清 （Hyclone公司） ]终止消化， 直到组织小块完全消化为止， 1200 r/min离心5 min, 完全培养基重悬沉淀， 接种至25 cm2培养瓶中， 40 min, 弃上清， 加入完全培养。48 h后首次更换完全培养基， 以后每2 d换液， 待细胞汇合约85%时， 胰蛋白酶细胞消化液 （含0.25%胰蛋白酶、0.02%EDTA） , 37℃， 2 min, 消化贴壁细胞， 以1∶3接种传代扩大培养， 细胞汇合近70%时， 4%多聚甲醛固定备用。
2.2 细胞免疫组织化学染色：
经固定过的细胞爬片， PBS冲洗， 3%H2O2孵育5~10 min, PBS冲洗， 山羊血清室温封闭10~15 min.分别滴加山羊抗大鼠盘状结构域受体2 （discoidin domain receptor 2, DDR2） 多克隆抗体 （1∶300, 美国Santa Cruz公司） 、兔抗大鼠成纤维细胞特异性蛋白1 （fibroblast specific protein, FSP1） 多克隆抗体 （1∶200, 美国Abcam公司） 和兔抗大鼠波形蛋白 （vimentin） 多克隆抗体 （1∶500, 美国Abcam公司） , 4℃过夜， PBS冲洗， 滴加相应的生物素化二抗工作液， 37℃孵育20 min, PBS冲洗， 滴加HRP标记链霉卵白素工作液 （S-A/HRP） , 室温孵育12 min.空白对照为PBS代替一抗， 其余相同。DAB显色， 苏木素复染细胞核， 自来水返蓝， 光学显微镜下观察， 图像采集和分析。
2.3 细胞免疫荧光染色：
经固定过的细胞爬片， PBS冲洗， 0.3%Triton透膜10 min, PBS浸洗3次， 每次3min.正常山羊血清室温封闭20 min, 分别滴加兔抗大鼠sca-1多克隆抗体 （1∶200, 德国Merck公司） 、兔抗大鼠c-kit单克隆抗体 （1∶300, 美国Santa Cruz公司） 、兔抗大鼠nanog多克隆抗体 （1∶200, 美国Santa Cruz公司） 、小鼠抗大鼠CD90单克隆抗体 （1∶500, 美国Abcam公司） 和小鼠抗大鼠CD73单克隆抗体 （1∶300, 美国BD公司） , 4℃过夜， PBS冲洗， PBS漂洗3次， 每次5 min;滴加相应二抗， 37℃孵育40 min, PBS漂洗3次， 每次5 min;5 mg/L DAPI室温孵育5 min, 抗荧光淬灭封片剂封片， 荧光显微镜下观察并摄片。空白对照为PBS代替一抗工作液， 其余步骤相同。荧光显微镜下行图像采集。
2.4 细胞免疫荧光三标染色：
经固定过的细胞爬片， 除分组加入一抗 （具体分组见表1） 外， 其余步骤同上。
2.5 数据统计学处理：
免疫荧光数据均采用SPSS17.0软件进行统计学分析。随机各取30个视野， 按下列公式计算：共表达率=共表达细胞数/有核细胞总数。结果以均值±标准差 （?±s） 表示， 两样本均数比较采用独立样本t检验， 多个样本均数的比较采用单因素方差分析， 检验标准α=0.05, P<0.05为差异有统计学意义。
结果
1.体外培养不同代次CFs形态学比较
酶联合消化法体外分离培养的CFs活力好， 增殖能力强， 传2~11代 （P2~P11） 后的CFs增殖能力与原代细胞比较， 均显示出同样的增殖能力。传代后的CFs, 尽管受到细胞消化液中酶的作用， 但在增殖期内仍表现出很强的适应性， 增殖能力继续保持稳定。在光学显微镜下观察， CFs形态多样， 大小不一。呈三角形、梭形、星形和多边形， 胞核较小， 双核细胞约占40%, 偶见3核细胞 （图1） .5~7 d细胞铺满培养皿底部， 约有85%CFs聚集， 呈现出漩涡状或放射状分布 （图1） .培养7 d后， 细胞大部分交叉重叠， 形成“编织状”外观。
原代 （primary, P0） CFs细胞边界较为清晰， 折光度好， 但经初次差速贴壁后， 纯度不够， 除CFs外， 还有少量小而圆的心肌干细胞， 内皮细胞， 偶见跳动的心肌细胞。经传代培养后， 成纤维细胞纯度大增。经细胞免疫荧光检测， P0纯度为95%, P1为99%, P2代为99.8%, P3~P11CFs纯度达到100%.但从形态上观察， P0~P9细胞， 胞核明显， 胞体较大， 有数量不等的短突起， 细胞折光度高， 无自发性搏动。但P10和P11 CFs, 细胞核变形， 染色质分布不均， 胞质所占比例减少， 内有颗粒状分布， 细胞边界更加模糊不清， 符合细胞衰老的形态学特征。综合考虑， P3~P5 CFs是用于后续实验的最佳代次。
2.成纤维细胞常见标记的免疫组织化学表达鉴定
将分离培养第3代CFs分别行vimentin、DDR2和FSP1细胞免疫组织化学染色， 结果显示， 形态各异的成纤维细胞对这3种成纤维细胞标记物均呈阳性染色 （图2） .如图2 A中所示， 构成细胞骨架的中间纤维蛋白---波形蛋白， 棕黄色颗粒分布于胞质中， 其他部位无非特异性染色；而作为膜受体的DDR2蛋白， 主要分布于胞膜及胞质近膜处， 但也有少部分呈现出胞核分布 （图2B） , 约有97.5%细胞呈DDR2阳性表达；FSP1则在胞质中呈均匀分布， 在胞核和胞膜中染色较淡 （图2C） .
3. CFs的干细胞表达标记检测
将分离培养第3代CFs经胚胎干细胞标记nanog, 心肌干细胞标记c-kit和sca-1, 间充质干细胞标记CD90和CD73, 及其内皮细胞标记CD31的细胞免疫荧光检测， 发现CFs不表达CD31 （图3F） , 而有部分细胞则表达这五种干细胞标记。c-kit主要表达于胞膜， 少量分布于胞质 （图3A） ;nanog主要分布在胞质， 呈强阳性表达 （图3B） ;sca-1主要分布于胞核和胞质中 （图3C） , CD90和CD73主要在胞膜中呈强阳性表达 （图3D, 3E） .
4. CFs的干细胞标记共表达检测
为检测CFs是否存在干细胞标记的共表达现象， 采取细胞荧光三标技术进行观察分析。结果显示， 部分CFs中nanog分别和CD73、CD90和sca-1存在共表达 （图4） .同时， 对nanog+/CD73+、nanog+/CD90+、nanog+/sca-1+和CD90+/sca-1+共表达阳性率进行统计分析， 结果显示， nanog+/CD73+共表达阳性率最高 （59.02%±8.39%） , 与其他3组相比差异均有极显着性 （P<0.01） ;而nanog+/CD90+共表达CFs阳性率与nanog+/sca-1+之间差异没有显着性 （P>0.05） , 但这两组与CD90+/sca-1+相比差异均有极显着性 （P<0.01） ;CD90+/sca-1+共表达CFs阳性率均低于其他3组 （29.35%±3.7%vs59.02%±8.39%, 43.55%±3.92%, 43.78%±10.88%） , 差异具有极显着意义 （P<0.01, 图5） .
讨论
CFs是心脏中数量最丰富的一种间质细胞， 分布广泛， 增殖迅速。其主要功能是合成和分泌细胞外基质 （extracellular matrix, ECM） , CFs与ECM共同构成复杂而精妙的三维网络结构， 支持并连接心肌细胞， 调节心肌细胞机械、电生理活动， 在心脏正常发育和病理性损伤修复中发挥重要作用[8,9].
目前， 成纤维细胞尚缺乏特异性表面标记， 对成纤维细胞的鉴定也存在诸多争议。只有确保成纤维细胞鉴定准确后， 才能保证对其研究的精准性。Vimentin是最常见的成纤维细胞分子标记， 但该蛋白也可标记内皮细胞和神经元[10];FSP1曾经被认为是成纤维细胞的特异性标记， 但淋巴细胞和肿瘤细胞也呈阳性表达[11];DDR2也可标记成纤维细胞， 但白细胞和肿瘤细胞中也有表达。有研究显示， 在心脏组织中， 心肌细胞、内皮细胞和平滑肌细胞中未检测到DDR2表达[12].本研究对体外分离培养新生大鼠CFs, 采用免疫组织化学分别检测vimentin、FSP1和DDR2表达。根据我们先前的研究认为， 除了根据以上这些标记物作为鉴定成纤维细胞之外， 还应该结合细胞来源、形态、分布等特征进行判断， 比如来自正常心肌组织的成纤维细胞不可能含有肿瘤细胞。另外， 根据细胞的形态特点可以明确地区别于心肌细胞 （有横纹） 和白细胞等[13].综合分析， 本研究采用3种标记综合判断， 筛选出的成纤维细胞纯度是达标的、可信的。
CD90为一种细胞表面黏附分子， 在细胞的黏附、凋亡、增殖和迁移等信号转导中发挥重要作用。有研究证明， 体外分离培养肺成纤维细胞中存在CD90+和CD90-亚群， 它们在炎症反应和纤维化进程中发挥不同作用[14].Rege等[15]证实， CD90+成纤维细胞更易转化为肌成纤维细胞 （myofibroblast, MFB） .心肌球来源 （cardiosphere-derived cells, CDCs） 的CD90-细胞在心肌梗死模型中则具有更大的修复潜能[16].Ali等[17]证实， Thy1+、CD45-、CD31-、CD11b-、Ter119-是心肌成纤维细胞中的主要亚群。
C-kit又称CD117, 酪氨酸激酶受体蛋白家族的重要成员之一， 是干细胞因子 （stem cell factor, SCF） 的受体， 它与SCF结合作为重要的受体配基复合物， 通过激活下游信号分子复合物， 产生强大的连锁反应， 从而在细胞分化、增殖中发挥重要作用[18].与c-kit类似， 干细胞抗原1 （stem cells antigen-1, sca-1） 也是一种造血干细胞标记物， 在调控造血干细胞和c-kit表达中发挥重要作用[19].移植分离培养心脏sca-1+/CD31-可实现对心肌梗死损伤的有效修复[20].nanog是一种胚胎干细胞转录因子， 在维持干细胞多能性中发挥重要作用， 调控基因的转录并保持干细胞的未分化状态[21,22].CD73在细胞生长发育、纤维蛋白合成及免疫应答等方面均发挥重要作用[23], Boiret等[24]证实， CD73在细胞增殖方面具有一定的促进作用。前期我们研究发现， 表达nanog蛋白的心脏成纤维细胞可能更具有干细胞样特性[13], 且nanog在CD73+脂肪间充质干细胞 （adipose tissue-derived mesenchymal stem cells, ADMSCs） 中呈现强阳性表达[25], 且CD73+ADMSCs具有更强的向心肌分化能力[26].
为比较CFs在干细胞表达方面差异， 结合我们前期工作基础， 细胞免疫荧光对nanog、c-kit、sca-1、CD90和CD73表达情况进行分析， sca-1+所占比例最大， 其次为nanog+, 而c-kit、CD90和CD73阳性细胞所占比例下降。为检测CFs是否存在干细胞标记的共表达现象， 采取细胞荧光三标技术进行观察分析。结果显示， nanog+/CD73+共表达阳性率最高， 与其他3组相比差异均有极显着性；而nanog+/CD90+共表达CFs阳性率与nanog+/sca-1+之间差异没有显着性， CD90+/sca-1+共表达CFs阳性率均低于其他3组， 差异具有极显着意义。虽然这些干细胞标记物在成纤维细胞的表达存在差异， 但足以提示成纤维细胞具有显着的干细胞特性， 且干细胞标记存在重叠性表达现象， 至于它们在细胞增殖、心肌分化、心肌损伤修复等过程中的具体作用， 有待进一步探讨。
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