4.2 尿液生化指标检测结果
实验结果显示，在造模期时，动物的 24 h 尿量明显减少，且出现了明显的蛋白尿，24 h 尿蛋白量与对照组相比具有极其显着的统计学意义（P<0.001）；在观察期，动物的 24 h 尿量与对照组相比无明显统计学意义，在第 8 周时 24 h 尿蛋白仍明显高于对照组（P<0.01），在第 10 周时，尿蛋白量虽仍高于对照组，但已无统计学差异。在整个实验过程中，尿肌酐均未见明显异常。结果见图 1.【1】
4.3 尿液半定量检查结果
尿常规结果显示，尾 iv C-BSA 未对大部分指标造成影响，包括未在尿中检测到红细胞和血红蛋白（数据未展示）。除蛋白质外，仅发现尿中白细胞量在第 4、6、8、10 周时显着升高。结果见表 2.
4.4 血液学指标检测结果
在造模期，模型组大鼠的 RBC、HGB、HCT、MCH 均有明显下降，具有统计学差异，第 4 周与第 6 周模型组比较无明显差异；进入观察期后仅在第 8 周可见 RBC、HGB 及 HCT 明显低于同期对照组，且与第 4、6 周模型组相应数据比较无明显差异，第 10 周时与对照组相比血常规指标全部无明显差异（表 3）。血常规其他指标仅偶见某单一指标变化，经分析无实际临床意义，因此结果未做展示。【2】
4.5 血清生化指标检测结果
4.5.1 对肾功能（Cr、BUN）的影响 在造模期及观察期，与对照组相比，模型组大鼠血清内 Cr、BUN均没有变化，无统计学意义。计算出 CCr 显示，第4 周时，模型组 CCr 稍低于对照组，无统计学差异；第 6 周时，模型组 CCr 进一步降低，显着低于对照组（P<0.05）；第 8 周时，模型组 CCr 与第 6 周模型组相比稍有提高，与对照组比较已无显着差异；第 8 周时，模型组 CCr 与对照组数值基本相当，无统计学差异。见表 4.
4.5.2 对血脂（TC、TG、HDL-C、LDL-C）的影响 数据显示，第 4、6、8 周时模型组血清内 TC、TG、HDL-C、LDL-C 与对照组相比均显着升高，提示脂代谢紊乱，第 10 周时 TG、LDL-C 仍高于对照组，而 TC、HDL-C 回复到正常水平（P>0.05），同时发现进入观察期后，TC、TG、HDL-C、LDL-C水平都出现了恢复趋势。见表 4.
4.5.3 对肝功能（AST、ALT、TBIL）的影响 造模第 4 周时，模型组 AST、ALT 的水平显着低于对照组，第 6、8、10 周时，ALT、AST 与对照组相比无显着变化。造模第 4、6 周时，模型组总胆红素（TBIL）含量显着降低，与对照组比较，具有显着的统计学意义，进入观察期后，TBIL 恢复到正常水平，与对照组相比无统计学意义。见表 4.
4.5.4 对血清蛋白（TP、ALB）的影响 实验结果表明，在造模期，模型组血清内 TP 及 ALB 均显着低于对照组，统计学差异极其显着；进入观察期后，在第 8 周时，模型组仅 ALB 水平仍低于对照组，TP 恢复到正常水平，在第 10 周时模型组 TP 及 ALB与对照组比较均无明显差异。见表 4.
4.6 血液流变学检测结果
血液流变学分析显示，在 C-BSA 造模期及之后的观察期中，与对照组相比，模型组大鼠全血黏度均没有变化。而模型组大鼠血浆黏度在第 4、6、8周时明显升高，第 8 周时血浆黏度与第 6 周模型组相比进一步降低（P<0.05），第 10 周时模型组血浆黏度与对照组相比无明显差异。见表 5.
4.7 病理学结果
镜下检查发现（图 2），实验第 4、6、8、10 周的模型组动物肾脏可见不同程度的肾小管蛋白管型、肾小管扩张、再生肾小管、间质炎细胞浸润、肾小球鲍曼氏囊增厚与相应对照组比较均有统计学意义（P 值分别为 0.019、0.003、0.012、0.007），提示造模成功。第 4、8 周与第 6 周的病变比较无统计学意义，表明造模 6 周的病变程度与造模 4 周比较无明显加重，第 8 周（造模后观察 2 周）病变程度无明显减轻；第 10 周与第 6 周比较有统计学意义（P=0.020），表明造模后恢复 4 周病变程度有所减轻。而肝脏在整个实验过程中均未见明显病变。5 讨论本研究使用 C-BSA 隔日尾静脉注射 4 周，可见血红细胞、血红蛋白、血清总蛋白、白蛋白、24 h尿量均明显降低，血脂（TC、TG、LDL-C）、血浆黏度、24 h 尿蛋白升高，造模 6 周时上述指标与正常值相比仍有显着差异，甚至有继续恶化的趋势，综合各项指标的变化情况符合肾炎病理病变特征。
总结前人研究 C-BSA 肾炎模型特点[10-13]:1）GBM原位可见 IC 沉积，主要有 IgG 和 C3;2）足突损伤，GBM 增厚，钉突形成。症状表现为大量的蛋白尿、脂代谢紊乱，与人类的肾病综合征相符，近似人类的膜性肾炎，本研究结果与文献报道相一致。另外，本研究首次发现，模型大鼠红细胞及血红蛋白均较正常大鼠偏低，提示模型大鼠出现了贫血症状，这一现象与慢性肾炎患者的临床症状相吻合，慢性肾小球肾炎患者可出现贫血、心衰等[14],其主要是由于肾实质受损，水分潴留所致的血液“稀释”,再者肾脏合成分泌的红细胞生成素减少，导致红细胞生成减少，大量蛋白随尿的排泄造成营养不良，都会导致贫血。研究发现，贫血和心衰等严重程度与肾脏病变及肾功能减退成正比[15].综合各项数据表明本研究成功复制了大鼠 C-BSA 肾炎模型。
实验结果显示，血清 Cr 和 BUN 在整个实验周期内与对照组相比无统计学差异，提示 Cr 和 BUN的值没有明显异常变化。多位学者[16-19]利用大剂量C-BSA 长周期给予复制了慢性肾功能衰竭（CRF）模型，在 4 周内亦未见 Cr 和 BUN,到 6 周时 Cr和 BUN 才明显升高，其解释为可能在 4 周内肾脏仍处于功能代偿期，健存肾单位发挥代偿作用，使Cr 和 BUN 的值尚处于正常范围内，6 周后由于健存肾单位的数目逐渐减少，肾小球的滤过功能显着降低，其值出现明显的升高。临床表现上，往往仅在慢性肾功能衰竭时 Cr 和 BUN 才会升高。依此来看，动物模型中 Cr 和 BUN 的变化程度与造模剂量及造模时间等因素有很大关系，低剂量短周期的造模确实可形成膜性肾炎模型，该期肾功能应处于代偿期，应不会有 Cr 和 BUN 的明显变化，一般认为当 CCr 降至 50%以下时，Cr 和 BUN 才会升高[20-21].
而目前在各种肾炎模型中监测 CCr 的报道相对较少，很难客观的评价所造模型对肾脏的损伤程度，也就很难确定 BUN、Cr 是否达到升高的程度。本研究发现，5 mg/只 C-BSA 隔日注射 6 周后，大鼠的 CCr 为 0.94 mL/min,显着低于正常值 1.24mL/min,仍远远未低到 50%以下，此时 24 h 尿蛋白定量数据显示模型组大鼠尿蛋白量仍为正常值的近 20 倍，说明肾脏确实已有炎性改变，但 Cr和 BUN 没有明显变化，本课题组认为该情况符合实际规律。
分析数据变化趋势发现，多项指标随造模的结束进入观察期后表现出恢复趋势，因此本研究将同期模型组数据与对照组数据相比，观察比值随时间的变化规律（图 3），结果显示随造模时间的延长模型病变程度逐渐加重，而造模结束后随恢复时间的延长模型病变程度又呈现逐渐减轻的趋势。这一变化规律目前很少有人报道，但主动型 Heymann 膜性肾炎模型容易恢复已有人提及[22],提示该类膜性肾病模型容易恢复是其特点之一。基于这一特点，使用该模型评价药物效用时，可采用预防给药的方式进行，采用治疗给药时，应密切关注模型恢复程度，以免数据失去可靠性。蛋白尿是肾脏病变程度的标志，它作为一个独立持久的致病因素参与肾脏的病变过程[23],尿蛋白的程度是肾脏疾病进展至终末期以及死亡率增加的显着孤立的决定因素[24],降低蛋白尿延缓肾病进展应是药物治疗取得收益的主要指标之一。膜性肾病的患者大约 80%伴有不同程度的低蛋白血症，结合本研究数据变化规律，本课题组认为白蛋白能够更为敏感的把血清蛋白水平与病变程度联系起来，可作为药效评价指标。低蛋白血症可通过一系列代偿机制导致高脂血症的出现，高脂血症也是肾小球硬化的主要致病因素之一，这一指标也逐渐被应用于临床前药物评价中来[25].而 Cr 和 BUN 虽是衡量肾功能的重要指标，却需根据模型情况而定，结合 CCr数据综合评价，当模型出现明显肾衰竭症状时可入选为评价指标，慢性肾炎的前中期则不适宜[26-27].
临床上肾组织活检是确定肾脏病理改变的唯一方法，但属有创性检查，不宜重复操作和动态监测病变发展过程，因此在临床前动物模型研究中，组织病理学检查就显的尤为重要，是确定药物疗效的重要且必不可少的指标。
综上，确实应看到动物的个体差异，造模时间、造模剂量等因素对模型程度的影响，慢性肾炎和慢性肾衰竭病变特征相互联系又有所区别，这一关系在该模型上得到了明显的体现，两类指标的变化相互掺杂，互为联系。该模型主要用于治疗膜性肾炎药物的疗效评价，且C-BSA的使用剂量为5 mg/只，造模 4 周以上为宜，随造模时间的延长模型将逐渐加重，评价指标中血清 ALB、TC、TG、尿白蛋白（推荐）、尿量及肾脏组织病理应为必须考察指标，而血清 Cr 和BUN 的选择与否需搭配内生 CCr 才具有实质意义。考虑模型存在一定的自我恢复情况，建议采用预防给药或边给药边造模的方式，造模停止后给药时间不宜超过 4 周，且给药期间应至少采集数据 1 次，监测指标的动态变化过程。另外，应根据受试药物的特点增加相应的评价指标，比如增加免疫组化检查、组织电镜检查、血液黏度检查、血常规检查等。
参考文献
[1] Border W A. Induction of membranous nephropathy inrabbits by administration of an exogenous cationicantigen [J]. J Clin Invest, 1982, 69（2）： 451-461.
[2] Adler S G, Wang H, Ward H J, et al. Electrical charge. Itsrole in the pathogenesis and prevention of experimentalmembranous nephropathy in the rabbit [J]. J Clin Invest,1983, 71（3）： 487-499.
[3] 赵武述， 陈 仁， 卞志强。 现代临床免疫学 [M]. 北京：人民军医出版社， 1994: 128.
[4] 徐红梅， 马跃荣， 孙 健。 小鼠膜性肾小球肾炎模型的复制 [J]. 中国比较医学杂志， 2004, 14（4）： 199.
[5] 章友康， 王叔咸， 杜学海， 等。 用阳离子化牛血清蛋白制作原位免疫复合物型肾炎模型 [J]. 中华肾脏病杂志， 1985, 1（1）： 7.
[6] 周宝宽， 孙 涛， 高 伟。 牛血清白蛋白的阳离子化及其在原位免疫复合物型肾炎模型制备中的应用 [J]. 中国免疫学杂志， 2007, 23: 648.
