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真核生物PRPF8蛋白可变剪切作用及应用

来源:中国草食动物科学 作者:曹涤非,黄国庆,薛佳莹
发布于:2021-03-29 共5134字

  摘    要: 可变剪切是真核生物转录过程中的重要调控机制,剪切体是可变剪切过程中的关键元素。PRPF8是可变剪切组分U5中的关键蛋白,在剪切过程中具有重要的作用。为此,文章介绍了PRPF8蛋白在可变剪切5’和3’位点的作用方式及其参与调控可变剪切因子的途径,总结了PRPF8蛋白可变剪切在动物生产和肿瘤研究中的应用,得出了PRPF8蛋白的研究价值,并对PRPF8蛋白在真核生物中的应用前景进行了展望。

  关键词: mRNA; 可变剪切; 剪切体; PRPF8;

  Abstract: Alternative splicing is an important regulatory mechanism in the transcription process of eukaryotes,and spliceosome is a key element in the alternative splicing.PRPF8 is a protein in the splicing component U5 and plays an important role in the splicing.To this end,this article introduced the mode of PRPF8 protein at the 5' and 3' sites of alternative splicing and the pathways involved in the regulation of alternative splicing factors,and summarized the research of PRPF8 protein in animal production and tumors.The PRPF8 protein has research value,and in eukaryotes has been prospected.

  Keyword: m RNA; alternative splicing; spliceosome; PRPF8;

  可变剪切是真核生物中的重要过程,也是基因多样性的重要原因。可变剪切主要在剪切体中完成。剪切体是可变剪切过程中的重要组分,由U1、U2、U4/U6、U5和200多种蛋白质构成,PRPF8是U5的主要组成成分,也是可变剪切中的核心蛋白。真核生物中,缺失PRPF8将导致许多生理或病理性疾病的产生。因此,本文就PRPF8在可变剪切过程中的作用进行综述。
 

真核生物PRPF8蛋白可变剪切作用及应用
 

  1 、PRPF8在5’和3’剪切位点的作用

  1.1、 PRPF8在5’SS剪切位点的作用

  1.1.1、 顺式剪切体中PRPF8交联到GU二核苷酸5’剪切位点

  Alvi等[1]研究发现,PRPF8交联探针在剪切复合物B中形成,然而在剪切中间体出现之前交联效率开始降低,表明5’SS RNA与PRPF8的相互作用在剪切后期被打断或改变。由于即使局部物理环境的微小变化也可能影响交联,但这种交联形成的损失不一定意味着5’SS RNA与PRPF8的相互作用在复合物B形成时中断。事实上,在剪切的催化阶段也有证据表明PRPF8与5’外显子上核苷酸结合。由于顺式和反式剪切系统在5’SS识别的细节上可能有所不同,在反式剪切反应中得出,GU二核苷酸与PRPF8相互作用可以在前m RNA顺式剪切底物的背景下检测得到,并且在反式剪切和顺式剪切反应中,PRPF8和GU二核苷酸之间的相互作用只在内含子的5’端。

  1.1.2 、在剪切复合物B的形成中,PRPF8与5’SS RNA交联

  通过5’SS序列检测发现,5’SS RNA与PRPF8在剪切复合体内交联。Kim等[2]研究发现,GU二核苷酸的突变以及U位置处的微小修饰干扰了PRPF8的复杂形成和交联。也有研究通过在5’SS RNA中缩短内含子的位点发现,缺失的核苷酸影响5’SS RNA与剪切亚基的结合,并且随着5’SS RNA与U6 sn RNA的碱基配对数量的减少,反式剪切、复合B生成和交联到PRPF8的效率也降低。Matera等[3]通过对5’外显子核苷酸的缺失分析,发现效果类似,特别是外显子长度从6到3或1nt也导致反式剪切复合物与PRPF8交联效率显着降低。为了进一步证明此结论,Ismaili等[4]在5’SSRNA亚基上将第5位G突变成U,导致复合物B形成与PRPF8交联能力降低,但效果不如上述效果显着。

  1.2 、PRPF8在3’SS剪切位点的作用

  PRPF8与3’SS交联不依赖于剪切位点序列变化。Umen等[5]通过对酵母提取物的研究发现,当m RNA前体3’SS CA突变取代进化保守的AG时,不能进行第2步剪切,而3’SS 1号位置仍与PRPF8在突变位点上发生交联反应。PRPF8与3’SS-6交联形成套索发生在剪切体第2步反应之前。它还可交联到另一侧3’剪切位点外显子6和7的位置上。因此,这3’SS交联是在第一步剪切之后,但在第2步之前,相互作用不依赖于3’剪切位点。Shepard等[6]研究发现,与野生型PRPF8比较,酵母pr p8-101(E1960K)突变位于PRPF8的5’SS交联区域内,但也导致3’SS识别缺陷,导致交联信号在内含子3’SS-1G位置交联信号降低2~4倍。第2步剪切过程中,Prp16p、Prp17p、Prp18p、Slu7p和Prp22p完全通过与3’剪切位点相互作用来实现功能。在这些第2步蛋白中,只有PRPF8p、Prp16p和Slu7p与3’SS交联。这表明PRPF8与前m RNA交联在3’SS区域是保守的,并且不依赖于剪切位点的序列。

  2、 PRPF8参与调控可变剪切组件的功能

  2.1、 参与调控Brr2剪切体的激活

  PRPF8负调控Brr2的解旋酶的激活。U5 sn RNP包含9种特异性蛋白。PRPF8基因编码U5 sn RNP特异性蛋白之一。Brr2属于公认的RNA解旋酶的DEXH-box家族成员。它是U4/U6-U5 sn RNPs的核心组成部分,可以催化依赖ATP的U4/U6 RNA双链的解旋。Huang等[7]的研究结果表明,Brr2的突变导致常染色体显性视网膜色素变性。

  遗传学表明,在剪切循环中PRPF8通过Brr2依赖的解旋负调控Brr2。事实上,Maeder等[8]研究表明,不排除PRPF8可能同时对Brr2具有正、负调控作用,主要是PRPF8的C端区域调节Brr2解旋酶的激活,进一步研究揭示,Brr2的活性由PRPF8泛素化调节。Mozaffari Jovin等[9]的研究结果表明,虽然对PRPF8的修饰位点尚不清楚,但推测出泛素在分子内被Jab1/MPN结构域所识别,更进一步研究证明了该区域的重要性:一种只含有最后300个氨基酸的截短形式的PRPF8足以刺激Brr2的解旋酶活性。这表明,PRPF8可调控Brr2解旋酶的激活,但通过泛素化位点与Jab1/MPN结构域的结合,并且在末端300个氨基酸的区域内实现。

  2.2 、结合剪切因子Aar2,促进U5 sn RNP可变剪切

  Aar2是U5 sn RNP复合物中的剪切因子,可与高度保守的U5特异性PRPF8的RNase H(RH)和Jab1/MPN结构域结合,形成剪切体催化中心的框架。Nakazawa等[10]研究发现,酵母双杂交研究中Aar2p结合位点定位于PRPF8p C末端,与PRPF8上的Brr2相互作用位点相吻合。通过分离的PRPF8p结构域的相互作用结果表明,Aar2p和Brr2p分别与PRPF8p结构域结合,包含PRPF8p的较大片段RH和JM,称为CTF。Gert等[11]通过对Aar2p与PRPF8p RH和JM结构域复合物结构的解析,阐明了Aar2p的结合位点。分离的PRPF8p CTF的结构证实了RH和JM的域排列。此外,Aar2p在RH结构域上占据已知的RNA结合位点,并干扰RH在体外与U4/U6 sn RNA的结合。Gert等[12]报道,在酵母中Aar2p可与PRPF8p的大片段的结构结合,证实Aar2p作为剪切体组装因子的作用并提供对PRPF8p结构的基本解析。Aar2p可与PRPF8p结合,不与突变后的PRPF8p结合,并抑制突变PRPF8p与HSP20的结合,促进U5 sn RNP的稳定性。在特定的构象中,Aar2p将PRPF8p C-末端结构域固定在一起,使RH空间上干扰JM-Brr2p结合。Aar2p空间上阻断了与PRPF8p结合的Brr2p的激活。因此,Aar2p可以抑制未成熟的剪切体的激活。

  3、 PRPF8可变剪切在动物中的作用

  可变剪切有5种常见的剪切形式,内含子滞留(Intron retention,IR)是其中的一种常见形式。其机制尚不清楚,但现有的研究结论揭示内含子上存在有可变的剪切位点,这些位点经常不能被正常识别,产生成熟m RNA序列中含有内含子序列[13]。PRPF8是剪切体的核心蛋白,有研究通过对U5中的剪切因子的研究发现,当PRPF8缺失,剪切过程中将产生大量的内含子滞留事件,出现新的剪切异构体,对机体或将产生新的功能[14]。李爱民[15]对中国地方性黄牛ANGPTL6基因遗传变异的研究结果表明,通过对基因序列的比对发现,由于内含子滞留导致ANGPTL6基因第3外显子出现内含子序列,出现新的可变剪切体,但并不影响基因前肽的生成。为了进一步分析可变剪切的影响,研究还将无内含子型(b ANGPTL6α)和有内含子型(b ANGPTL6β)ANGPTL6转录体共表达在秦川牛肝脏组织中,得出b ANGPTL6β对胴体重有显着的负调控作用。因此,PRPF8也可通过调控关键基因的可变剪切导致动物机体生理或病理现象的产生,影响动物机体的功能。

  PRPF8是可变剪切的关键性蛋白,缺失会导致内含子滞留和外显子跳跃等事件的发生。梁巍[16]对秦川牛PSMC5基因RNA-seq分析发现,PSMC5基因中出现一种新的可变剪切体AS2,此剪切体属于外显子跳跃类型,因此共缺失128个氨基酸。新的剪切体仅在成年牛的脾、腹肌、背最长肌、腹脂、前腿脂等组织中表达,结果提示新的剪切体可能在这些组织中发挥作用。

  4、 PRPF8可变剪切在肿瘤中的作用

  PRPF8是生物生存的关键性基因。现有研究发现,在细胞中敲除PRPF8会导致细胞的死亡,在Hela细胞中敲除PRPF8也导致了细胞死亡。Abdel-Wahab等[17]通过在其他癌细胞的验证中得出,在乳腺癌细胞和结肠癌细胞系HCT116和DLD1中沉默PRPF8都可以导致细胞死亡。这证明PRPF8是一个功能非常保守的并且与肿瘤细胞生长具有重要关系的调控因子,PRPF8的缺失对肿瘤细胞特别是乳腺癌细胞的生存造成巨大的影响,抑制乳腺癌细胞的增殖,调控细胞的生长,对于细胞的生存具有重要作用。

  5 、展望

  随着人类基因组测序的完成,人类对基因的研究聚集到了基因的源头———转录调控,m RNA可变剪切是转录过程中的重要过程,这一过程主要由剪切体完成。PRPF8是剪切体U5的核心蛋白,在可变剪切中具有重要的功能。同时综合所有研究结果发现,PRPF8的缺失可造成可变剪切的异常,产生不同的结果。动物如牛等草食动物,PRPF8缺失可影响基因的m RNA剪切,发生内含子滞留产生新的剪切体,导致牛胴体重出现异常变化,使牛体内产生生理或病理性的变化;PRPF8缺失也可导致外显子跳跃,产生新的剪切体在牛体内的正常组织中高表达,协调机体的生理功能,促进牛机体的发育,是利于牛生长的正向调控。可变剪切在疾病中特别是肿瘤中也具有重要的价值。可变剪切可导致机体出现各种异常表达的蛋白,这些蛋白的产生有可能是疾病发生发展的关键,PRPF8缺失就可导致癌细胞的死亡。因此,对于基因的研究或许可以将重点放到可变剪切调控中,利用可变剪切产生新的剪切体,这些新的剪切体可对机体的基础研究和疾病研究带来重大的进展。

  参考文献

  [1] Alvi R K,Lund M,Okeefe R T.ATP-dependent interaction of yeast U5sn RNA loop 1 with the 5’splice site[J].RNA,2001,7:1013-1023.
  [2] Kim C H,Abelson J.Site-specific crosslinks of yeast U6 sn RNA to the pre-m RNA near the 5’splice site[J].RNA,1996,2:995-1010.
  [3] Matera A G,Wang Z.A day in the life of the spliceosome[J].Nature Reviews Molecular Cell Biology,2014,15(2):108-121.
  [4] Ismaili N,Sha M. The 100-k Da U5 sn RNP protein(h Prp28p)contacts the 5’splice site through its ATPase site[J].RNA,2001,7:182-193.
  [5] Umen J G,Guthrie C.Mutagenesis of the yeast gene PRPF8 reveals domains governing the specificity and fidelity of 3′splice site selection[J].Genetics,1996,143:723-739.
  [6] Shepard P J,Choi E A,Busch A,et al.Efficient internal exon recognition depends on near equal contributions from the 3’and 5’splice sites[J].Nucleic Acids Research,2011,39(20):8928-8937.
  [7] Huang Y H,Chung C S.Sad1 counteracts Brr2-mediated dissociation of U4/U6.U5 in trisn RNP homeostasiss[J].Mol Cell Biol,2014,34:210-220.
  [8] Maeder C,Kutach A K,Guthrie C.ATP-dependent unwinding of U4/U6 sn RNAs by the Brr2 helicase requires the C terminus of Prp8[J].Nat Struct Mol Biol,2009,16:42-48.
  [9] Mozaffari-Jovin S,Santos K F.The Prp8 RNase H-like domain inhibits Brr2-mediated U4/U6 sn RNA unwinding by blocking Brr2 loading onto the U4 sn RNA[J].Genes Dev,2012,26:2422-2434.
  [10] Nakazawa N,Harashima S,Oshima Y.A gene for splicing pre-m RNA of the MATa1 cistron in cell type control of Saccharomyces cerevisiae[J].Mol Cell Biol,1991,11(11):5693-5700.
  [11]Gert Weber,Vanessa F,Crist筋o,et al.Mechanism for Aar2p function as a U5 sn RNP assembly factor[J].Genes Dev,2011,25(15):1601-1612.
  [12]Gert Weber,Vanessa F,Crist筋o,et al.Structural basis for dual roles of Aar2p in U5 sn RNP assembly[J].Genes Dev,2013,27(5):525-540.
  [13] Matera A G,Wang Z.A day in the life of the spliceosome[J].Nature Reviews Molecular Cell Biology,2014,15(2):108-121.
  [14] Naoki Sato,Masao Maeda,Mai Sugiyama,et al.Inhibition of SNW1association with spliceosomal proteins promotes apoptosis in breast cancer cells[J].Cancer Med,2015,4(2):268-277.
  [15]李爱民.中国地方黄牛ANGPTL6基因遗传变异、可变剪切及克隆表达研究[D].杨凌:西北农林科技大学,2012.
  [16]梁巍.秦川牛PSMC基因家族遗传变异、可变剪切及启动子区甲基化研究[D].杨凌:西北农林科技大学,2016.
  [17]Abdel-Wahab O,Levine R.The spliceosome as an indicted conspirator in myeloid malignancies[J].Cancer Cell,2011,20(4):420-422.

作者单位:黑龙江省科学院高技术研究院
原文出处:曹涤非,黄国庆,薛佳莹,吴琼,王雷,李瑶,孙尧.PRPF8蛋白在真核生物可变剪切中的作用[J].中国草食动物科学,2021,41(01):49-51.
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