2，3-丁二酮又名双乙酰、丁二酮，是一种黄色至浅绿色且具有强烈奶油香味的重要香料。2，3-丁二酮天然存在于发酵乳制品和啤酒等发酵饮料中，1983年被美国食品药品监督管理局( FDA) 规定为 GＲAS级( generally recognized as safe) ，广泛用作焙烤食品、非酒精饮料、糖果、乳制品替代品、奶油等食品的风味物质［1 －4］。最近的研究表明，2，3-丁二酮具有导致闭塞性细支气管炎、诱导氧化应激等毒性作用，食品中 2，3-丁二酮的安全性问题引起了国内外的广泛关注［5 －6］。本文综述了食品中 2，3-丁二酮形成机制和检测方法方面的研究进展。
1 食品中 2，3-丁二酮形成机制
在食品加工过程中，2，3-丁二酮的形成途径主要包括脂质氧化、糖类分解、美拉德反应、微生物发酵和核黄素光敏氧化等。
1. 1 脂质氧化
富含脂肪酸的食品在烹调和热加工过程中能够产生 2，3-丁二酮等羰基化合物，其可能反应途径见图 1［4］。不饱和脂肪酸在超氧阴离子( O－2·) 、单线态氧(1O2) 、羟自由基( ·OH) 等活性氧作用下发生过氧化反应，形成氢过氧化物、环氧化合物等中间产物，中间产物能够继续反应并生成 2，3-丁二酮等活性羰基化合物［3，7］。例如，生牛乳中 2，3-丁二酮含量为 5 μg/kg，依次经 82℃加热 30 min、146℃ 加热 4 s后，2，3-丁二酮含量升高到 38 μg/kg［8］。Jiang 等的研究表明，奶油和人造黄油中 2，3-丁二酮的生成量随加热温度升高而显着升高; 经 100℃ 和 200℃ 加热1 h 后，人造黄油中 2，3-丁二酮含量分别为( 264. 3 ±38. 8) ng / g 和( 2 274. 5 ± 442. 6) ng / g。【1】
1. 2 糖类分解
糖类化合物在加工过程中的热分解是食品中 2，3-丁二酮形成的另一种重要途径。如图 2 所示，加工过程中单糖分子发生异构化( 主要存在于果糖和葡萄糖之间) ，异构化产物果糖通过一系列反应形成酮-烯醇式互变异构; 在碱性或酸性条件下，酮-烯醇式互变异构中 C4—C5键发生断裂而形成 2，3-丁二酮和乙二醛［4］。加热温度、时间和 pH 是影响 2，3-丁二酮生成的主要因素。2，3-丁二酮生成量随加热温度升高、加热时间延长而升高; 蔗糖加热过程中 2，3-丁二酮形成的最适 pH 值范围为 6 ～ 8［10］。对于葡萄糖，其断键位置可能在 C2和 C3之间［11］。【2】
除图 1 和图 2 所示的 2，3-丁二酮形成途径以外，脂质和糖类通过氧化或分解产生的一系列低分子量羰基自由基［·C O、·CHO 和·C O( CH3) ］在吸收能量后也能够生成包括2，3-丁二酮在内的 α-二羰基化合物［4，10］。
1. 3 美拉德反应( Maillard reaction)
美拉德反应是发生于氨基化合物( 蛋白质、肽、胺、氨和氨基酸等) 和羰基化合物( 还原糖、脂质以及由此而来的醛、酮等) 之间的一系列形成食品中香味和色素类物质的复杂反应［12］。2，3-丁二酮是一种重要的美拉德反应产物，是构成咖啡香味的主要物质［10］。在 D-葡萄糖、氨水和亚硫酸盐组成的美拉德反应模拟体系中，2，3-丁二酮的生成量随葡萄糖和氨水浓度的升高而升高，而美拉德反应抑制剂Na2SO3能显着抑制 2，3-丁二酮的生成［10］。
此外，国外对美拉德反应过程中 2，3-丁二酮的形成机制进行了大量研究。在［13C － 2］甘氨酸 / 葡萄糖模拟反应体系中，70% 的 2，3-丁二酮分子结构中含有 1 个13C 原子，表明氨基酸参与了美拉德模拟反应体系中丙酮醛到 2，3-丁二酮的转化［11］。在［13C－ 2］甘氨酸 / 乙二醛模拟反应体系中，2，3-丁二酮全部被13C 标记; 而在［13C － 2］甘氨酸 / 丙酮醛模拟反应体系中，2，3-丁二酮全部含有 1 个13C 原子1。以上结果表明，2，3-丁二酮的形成涉及氨基酸中 C 原子与二羰基化合物之间的反应［11］。综上所述，美拉德反应中除糖类化合物的热分解反应形成 2，3-丁二酮以外，氨基酸与糖类化合物降解产物( 活性醛类化合物) 之间的反应也是形成 2，3-丁二酮的重要途径。
1. 4 微生物发酵
1及发酵乳制品中，2，3-丁二酮主要由微生物代谢产生［13 －14］。影响微生物合成 2，3-丁二酮的因素主要包括微生物种类、发酵底物和发酵时间等。能够代谢产生 2，3-丁二酮的微生物主要包括乳酸菌属［14］、芽孢杆菌属［14 －15］、肠杆菌属［16 －17］、明串珠菌［18］以及某些酵母［13，19 －20］，其底物主要包括葡萄糖、柠檬酸以及牛乳等。李妍等的研究表明，2，3-丁二酮合成能力由高到低依次为瑞士乳杆菌、干酪乳杆菌和保加利亚乳杆菌［21］。同时，微生物种类也影响了 2，3-丁二酮的生成动力学。大部分乳杆菌的 2，3-丁二酮产量随发酵时间的延长而升高，而在菌株 Lb. casei sub-sp. casei 154 发酵姜汁过程中，2，3-丁二酮产量在 18h 即达到最大值并随发酵时间的延长而降低［22］。
国内外对乳发酵过程中 2，3-丁二酮的生成途径、生成条件及代谢调控方式等进行了大量研究，发现乳酸菌主要通过柠檬酸途径和葡萄糖途径合成 2，3-丁二酮［17 －19］。在乳酸菌等微生物的柠檬酸代谢途径中( 图 3) ，柠檬酸在柠檬酸裂解酶的作用下裂解为乙酸和草酰乙酸，草酰乙酸经脱羧形成的丙酮酸则进一步形成乙醛-焦磷酸硫胺素( 乙醛-TPP) ，乙醛-TPP经 α-乙酰乳酸合成酶催化生成的 α-乙酰乳酸在 O2存在条件下不稳定，经过非酶氧化脱羧反应形成 2，3-丁二酮［23 －24］。在乳酸菌等微生物的柠檬酸代谢途径中( 图 3) ，乳糖、半乳糖和葡萄糖等经一系列生化反应生成丙酮酸，丙酮酸经一系列酶促反应和非酶氧化脱羧反应形成 2，3-丁二酮［23，25］。生成的 2，3-丁二酮不稳定，可继续反应生成乙偶姻和 2，3-丁二醇［23］。【3】
1. 5 核黄素光敏氧化
Jung 等证实，食品中核黄素( 即 VB2) 经光敏氧化也能够形成 2，3-丁二酮，其可能途径见图 4［26］。核黄素是一种水溶性维生素，广泛存在于牛乳、鸡蛋、肉类、蔬菜等食物中。游离核黄素对光很敏感，与单线态氧的反应速率为 1. 01 ×1010( M·s)－ 1。光照尤其是紫外线照射下，核黄素极易发生不可逆分解，造成食品中核黄素含量的快速降低［27］。核黄素( 溶解于0. 1 mol / L、pH 6. 5 的磷酸缓冲液) 经 3 000 lx 的强光照射 3 h 即可生成 2，3-丁二酮，且 2，3-丁二酮生成量随光照时间延长而升高［26］。叠氮化钠是单线态氧的淬灭剂，可有效抑制光照诱导的 2，3-丁二酮生成［26］。【4】
2 食品中 2，3-丁二酮检测方法
鉴于 2，3-丁二酮的潜在安全性问题，食品中 2，3-丁二酮检测方法的建立是其安全性评价的基础［28 －29］。目前，食品中 2，3-丁二酮的检测方法主要包括紫外分光光度法、荧光分析法、气相色谱法( GC) 、高效液相色谱法( HPLC) 、生物传感器法、极谱法以及化学发光法等。
2. 1 紫外分光光度法
由于 2，3-丁二酮结构中不含发色团，紫外分光光度法检测时一般需先进行显色反应，常用的显色剂主要包括肌氨酸和邻苯二胺。肌氨酸比色法的原理是: 在 β-萘酚存在的碱性条件下，2，3-丁二酮与肌氨酸的胍基基团发生反应并形成粉色产物，可通过显色40 min 后测定 525 nm 吸光度进行定量分析［22，30］。
采用该方法测定 2，3-丁二酮时需注意排除乙偶姻干扰，这是因为在分析测定过程中乙酰乳酸能够通过氧化脱羧反应生成 2，3-丁二酮，并且 2，3-丁二酮与其代谢产物乙偶姻在 522 nm 处的吸光度类似［30］。一些学者通过 2，3-丁二酮与乙偶姻形成粉色产物的速率不同而分别于显色 1 min 和60 min 测定2，3-丁二酮和乙偶姻的浓度。但 1 min 后，乙偶姻仍能部分参与粉色产物的形成，导致 2，3-丁二酮的测定结果偏高［23］。
《GB/T 4928 －2008 啤酒分析方法》采用测邻苯二胺比色法( EBC 法) 测定啤酒中 2，3-丁二酮含量，其原理为2，3-丁二酮等 α-二羰基化合物能够与邻苯二胺反应生成 2，3-二羟基喹喔啉等喹喔啉类衍生物，该类物质在 335 nm 下有最大紫外吸收峰，可以用比色分析法进行测定( 图 5) 。与肌氨酸比色法类似，由于其他联二酮化合物具有相同的反应活性且在蒸馏过程中形成新的联二酮化合物，该方法的灵敏性较低，测定结果为样品中总联二酮含量［31］。【5】
2. 2 荧光分光光度法
荧光比色法也常用于 2，3-丁二酮的测定［32 －34］。
基于邻苯二胺与 2，3-丁二酮形成的化合物具有荧光特性，陈淑珠等建立了测定酒类中 2，3-丁二酮的荧光检测方法，该方法的检测范围为 5 ～ 360 μg/L，检测限为 3. 2 μg/L［34］。荧光比色法灵敏度接近气相色谱( GC) ，但其检测结果与火焰离子化检测气相色谱法( GC-FID) 测定结果存在一定偏差［33］。
2. 3 液相色谱法和气相色谱法
高效液相色谱法( HPLC) 和气相色谱法( GC) 具有高效、快速、准确性好、灵敏度高、重现性好、检测限低、定量准确等特点，广泛应用于食品中 2，3-丁二酮的检测分析。由于 2，3-丁二酮分子量较小且无发色团，色谱检测时一般需进行化学衍生。HPLC 检测 2，3-丁二酮常用的衍生剂包括邻苯二胺［35］和 4-硝基邻苯二胺［36］，一般采用紫外检测器［35 －36］、二极管阵列检测器［37］和质谱检测器［38］。Li 等采用 4-硝基邻苯二胺柱前衍生和 Kromasil 反相 C18色谱柱( 250 mm ×4. 6 mm，5μm) 检测啤酒中的 2，3-丁二酮，紫外检测波长为 257 nm。该方法的检测范围和检测限分别为0. 005 0 ～ 10. 0 mg / L 和 0. 000 8 mg / L［36］。2，3-丁二酮的气相色谱检测方法主要包括火焰离子化检测气相色谱法 ( GC-FID)［39］、顶空气相色谱法 ( HS-GC)［40］和固相微萃取-气相色谱/质谱法( SPME-GC-MS)［41］等。Chen 等建立了基于 SPME-GC-MS 的奶油样品中 2，3-丁二酮的检测方法。样品经聚二甲基硅氧烷/二乙烯基苯( PDMS-DVB) 固相微萃取纤维头于 37℃ 萃取 5 min 后，采用 SPB-1 SULFUＲ 色谱柱( 60 m ×0. 25 mm I. D，3. 0 μm) 进行分离，电子轰击电离源( EI) MS 检测。该方法的检测范围为 0. 024 ～11. 2 mg / kg，检测限为 0. 007 8 mg / kg［41］。
2. 4 生物传感器法
张介驰等利用双乙酰还原酶( diacetyl reductase，DＲ) 和还原型辅酶 I( NADH) 共固定作为工作酶膜，用 Fe2 +/ Fe 和 2，3-丁 二 酮 还 原 过 程 中 产 生 的NAD+/ NADH 构建 2，3-丁二酮检测生物传感器［42］。
该方法的原理为: 在 2，3-丁二酮被 DＲ 还原的同时，NADH 被氧化成 NAD+。在双乙酰还原酶量足够大的情况下，NAD+生成速度和生成量与底物2，3-丁二酮浓度成正比，通过电流信号而检测 2，3-丁二酮浓度。该方法可准确检测 0. 1 ～0. 5 mg/L 内的 2，3-丁二酮含量［42］。
2. 5 极谱法
极谱法检测2，3-丁二酮是基于 α-二羰基化合物与邻苯二胺反应并生成的喹喔啉类化合物。喹喔啉是极谱分析中的显色化合物，适用于极谱分析法［43 －44］。Esteve 等建立了 2，3-丁二酮的极谱检测方法，该方法的线性范围为 0 ～960 mg/L，对果汁、奶油和酸奶样品的检测线为 0. 2 ～0. 4 μg/L［45］。该方法同时结合了邻苯二胺衍生反应的选择性和极谱技术的专一性，且不需要对样品进行复杂的前处理。
2. 6 化学发光法
Kele 等建立了基于 2 种水溶性钌复合物( ＲuPD和 ＲuPP) 的 2，3-丁二酮化学发光法检测法。该方法的原理是 2，3-丁二酮能够与钌复合物的二胺结构发生反应并导致几乎没有发光特性的钌复合物的发光强度增强 31 倍［46］。该方法的检测限能够达到微摩尔级，并可用于细胞培养基中 2，3-丁二酮的检测。
3 展望
除作为香味物质广泛应用于食品加工，2，3-丁二酮还广泛应用于医药、农药和精细化学品合成等领域。食品中 2，3-丁二酮除来自人为添加以外，在加工过程中，脂质、糖类、维生素等食品组分能够通过过氧化、氧化分解、美拉德反应、光敏氧化等多种途径形成 2，3-丁二酮。虽然 2，3-丁二酮被美国 FDA 列为GＲAS 级，但其安全性引起了各方面的广泛关注。目前，国内涉及 2，3-丁二酮安全性的研究报道比较少，相关研究有待加强。在今后的研究中，首先要开展不同食品中 2，3-丁二酮含量数据的收集工作，同时结合我国居民各类食物消费量，对食品来源的 2，3-丁二酮摄入状况进行风险评估。其次，应进行食品中氨基酸、脂肪和糖类等成分的组成和含量影响 2，3-丁二酮生成方面的相关研究，并深入揭示不同食品组分形成 2，3-丁二酮的化学反应途径。此外，还应研究不同加工方式和工艺参数条件对食品加工过程中 2，3-丁二酮生成的影响，并通过改善加工工艺等方式降低 2，3-丁二酮的生成，以期保护消费者健康。
